Directives de perte de poids de souris. A Controlled Mouse Model for Neonatal Polymicrobial Sepsis | Protocol (Translated to French)

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Abstract Septicémie néonatale reste un fardeau mondial. Un modèle préclinique à des interventions prophylactiques ou thérapeutiques efficaces écran est nécessaire.

Transport et législation

En conclusion, cette approche fournit une méthode normalisée de septicémie néonatale modèle chez la souris, tout en fournissant des ressources pour évaluer le bien-être des animaux utilisé pour définir les points limites précoces pour animaux contestée. Introduction Une septicémie est une cause majeure de décès infectieuse nouveau-né humain1. Ainsi, septicémie néonatale doit être étudiée chez les nouveau-nés.

Cette méthode alternative a été adaptée par plusieurs groupes14, Avec des doses différentes, les volumes de défi accompagnement changent par nécessité. Actuellement, les critères du point de terminaison sans cruauté servant de souris néonatales âgés de 5 à 12 jours dans la littérature de lisier caecum toute référence au manuscrit original qui a présenté le modèle2.

Le transport de l'animal de laboratoire | Inserm - La science pour la santé

Informations comportementales des scores de santé souris parmi plus de animaux de laboratoire a été collectées et regroupées lalcool est-il mauvais pour la perte de poids le résultat final de la survie, démontrant une définition axée sur les éléments de preuve du point de terminaison sans cruauté. Submerger les outils dans le stérilisateur de boudin chaud préchauffé pendant au moins 1 min.

Attendre 30 s à 2 min pour les outils nécessaires pour refroidir avant de les utiliser pour la dissection. Euthanasier les donateurs de lisier caecum conformément aux directives locales de soins aux animaux, ou utiliser le protocole ci-dessous. En phase terminale euthanasier les souris par forte dislocation cervicale. Retirer toute fourrure du péritoine.

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Identifier le caecum, qui devrait être exécuté à gauche à droite à travers le corps. Placez le caecum sur une feuille stérilisée de pesée papier. Par ailleurs, le caecum peut être disséqué sur une plaque de Petri stérile.

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Recueillir le contenu et les placer dans un tube à centrifuger prépesé 15 mL. Peser à nouveau le tube une fois que tous les contenus ont été ajoutés.

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Dans un baccalauréat, ajouter la quantité requise de D5W glacée dans le tube à centrifuger 15 mL contenant le contenu du caecum. Vortex le 15 mL centrifuger le tube verticalement et horizontalement pendant 30 s.

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Pipetter 4 mL de lisier caecum resuspendue dans la crépine de la cellule et, ensuite dans le tube de prélèvement. Remettre en suspension les particules de pipetage et descendre 2 x x Aliquoter le lisier caecal. Puis, vortex pour 15 s et verser 20 mL dans un tube à centrifuger de nouveau 50 mL.

Placer immédiatement le maître stock et aliquoté flacon cryogénique sur glace.

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Répétez les étapes 2. Chaque flacon de stock devrait être à peu près assez de défi une litière de huit souris 7 DOL. Ensuite, le moule le matériaux de nidification dans un petit nid et placez-le dans une nouvelle cage sans le barrage. Transférer les souris néonatales dans le matériaux de nidification dans la nouvelle cage.

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Transfert de matériaux de nidification plus pour faire un deuxième nid vide dans la nouvelle cage. Peser chaque souris qui sera mise au défi, plaçant chacun dans le secondaire nid après avoir pesé et répétez cette opération pour toutes les souris.

Calculer la milligrammes de caecum lisier unqui sera administrée à chaque souris en multipliant le poids de la souris en grammes b de la dose de défi désiré en milligrammes de lisier caecum par gramme de souris c.

Moyenne du stock volume de lisier caecum exigé par souris g en additionnant le volume du stock de lisier caecum d par souris dans une litière de souris ndivisé par le nombre de souris n. Calculer le montant total du stock de lisier caecum en microlitres l en multipliant la boue caecum stock moyenne par souris en microlitres g par le nombre de souris dans cette litière n et en multipliant par 1,4 pour créer supplémentaire.

Calculer le montant total de D5W en microlitres m pour diluer le stock de lisier caecum en multipliant le volume requis moyen de D5W k par le nombre de souris n et en multipliant par 1,4 pour créer supplémentaire.

Transport et stress

Dans un baccalauréat, décongeler le nombre requis de flacons stock caecum de boue à température ambiante, pipetage son contenu pour mélanger. Feuilleter la seringue pour déloger les bulles du plongeur, tirer légèrement sur la seringue et puis expulser les bulles.

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Par voie intrapéritonéale injecter coulis caecal, conformément aux directives pertinentes animalier local institution, ou suivez les étapes décrites ci-dessous. Dans un baccalauréat, séparer les souris néonatales du barrage comme indiqué au point 3.

Placez la souris sur du papier absorbant et laisser la souris de franchir une directives de perte de poids de souris. Si la souris est immobile pendant 5 s, puis appuyez légèrement sur la queue. Par la suite surveiller toutes les h pour les 2 premiers jours, sauf pour les 8 h pendant la nuit, quand les souris néonatales sont sans surveillance.

Au-delà de 2 jours postchallenge, surveiller 1 x x-2 par jour.

1. SEULES LES CALORIES COMPTENT

Si malade souris ou souris dont le score santé diminue sont observés, puis augmentez la fréquence des contrôles à tous les h. Surveillance de souris néonatales Pour toute procédure impliquant des souris néonatales, transfert de la matière à une nouvelle cage de literie comme indiqué au point 3.

L' accent mis sur la surveillance clinique de la maladie, C. Introduction Log in or Start trial to access full content. Infection à C. Actuellement, le traitement antibiotique vancomycine et métronidazole sont considérés comme la norme de soins pour CDI 5.

Vérifiez soigneusement les nouveau-nés qui sont déplacées directives de perte de poids de souris nid tout en soins infirmiers.

Les souris qui sont traînés hors de la litière, tandis que les infirmières ne sauraient être injecté souris. Mesurer les réflexes de redressement des souris et la mobilité. Sur une serviette en papier, placez la souris sur le dos et surveiller pour sa capacité à droite elle-même dans un délai maximum de 4 s. Il est toujours groupé comme étant capable de droit elle-même si elle tombe.

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